Множественная миелома с экстрамедуллярной плазмоцитомой: аспекты патогенеза и клиническое наблюдение

Введение. Множественная миелома, осложненная экстрамедуллярной плазмоцитомой, – неблагоприятный вариант заболевания. Остается неизвестным, что является триггером, запускающим опухолевую трансформацию. В обзоре представлены данные литературы о патогенезе экстрамедуллярного поражения, а также приведен клинический пример разностороннего изучения опухолевого субстрата.
Цель исследования – изучение молекулярно-биологических характеристик опухолевого субстрата костного мозга и экстрамедуллярной плазмоцитомы с помощью различных методов.
Материалы и методы. пациентка, 55 лет, поступила с диагнозом множественной миеломы, протекающей с экстрамедуллярной плазмоцитомой забрюшинного пространства. Была выделена ДНК из образцов различной локализации (плазма крови, Cd138+-клетки костного мозга, клетки плазмоцитомы и буккального эпителия). профиль коротких тандемных повторов (STR) ДНК из полученных образцов исследовали методом мультиплексной полимеразной цепной реакции с последующим фрагментным анализом. проводили флуоресцентную in situ гибридизацию (fISH) Cd138+-клеток костного мозга с использованием различных ДНК-зондов, также сравнительную геномную гибридизацию на микроматрице (arrayCGH) ДНК плазмоцитомы. Мутационный профиль генов KRAS, NRAS, BRAF изучали методом секвенирования по Сэнгеру в образцах опухоли различной локализации.
Результаты. проводимая индукционная терапия (vCd (бортезомиб + циклофосфамид + дексаметазон), vRd (бортезомиб + леналидомид + дексаметазон), терапия даратумумабом) была неэффективной, констатирована смерть через 4 мес после возникновения первых клинических проявлений. при сопоставлении STR-маркеров опухолевой свободно цикрулирующей в плазме ДНК (сцДНК плазмы), Cd138+-клеток костного мозга, плазмоцитомы наибольшее количество вовлеченных локусов выявлено именно в ДНК плазмоцитомы. Мутация в гене NRAS обнаружена только в ДНК плазмоцитомы. это свидетельствует о присутствии в экстрамедуллярной плазмоцитоме другого клона опухолевых клеток. при молекулярном кариотипировании плазмоцитомы методом arrayCGH выявлены перестройки множества хромосом. Биаллельная делеция локуса 1p32.3, амплификация 1q21, перестройка в локусе 8q24 и del17p13 подтверждены при молекулярном кариотипировании методом arrayCGH и при fISH-исследовании в костном мозге и плазмоцитоме.
Заключение. Разностороннее молекулярно-генетическое исследование субстрата экстрамедуллярной плазмоцитомы необходимо для понимания механизмов патогенеза и на этой основе – для разработки дифференцированных терапевтических подходов.

1. Rajkumar S.V., Dimopoulos M.A., Palumbo A. et al. International Myeloma Working Group updated criteria for the diagnosis of multiple myeloma. Lancet Oncol 2014;15(12):e538–48. DOI: 10.1016/S1470­2045(14)70442­5

2. Usmani S.Z., Heuck C., Mitchell A. et al. Extramedullary disease portends poor prognosis in multiple myeloma and is over­ represented in high­risk disease even in the era of novel agents. Haematologica 2012;97(11):1761–7. DOI: 10.3324/haematol.2012.065698

3. Varettoni M., Corso A., Pica G. et al. Incidence, presenting features and outcome of extramedullary disease in multiple myeloma: a longitudinal study on 1003 consecutive patients. Ann Oncol 2010;21(2):325–30. DOI: 10.1093/annonc/mdp329

4. Bladé J., Fernández de Larrea C., Rosiñol L. et al. Soft­tissue plasmacytomas in multiple myeloma: incidence, mechanisms of extramedullary spread, and treatment approach. J Clin Oncol 2011;29(28):3805–12. DOI: 10.1200/JCO.2011. 34.9290

5. Weinstock M., Aljawai Y., Morgan E.A. et al. Incidence and clinical features of extramedullary multiple myeloma in patients who underwent stem cell transplantation. Br J Haematol 2015;169(6):851–8. DOI: 10.1111/bjh.13383

6. Rasche L., Bernard C., Topp M.S. et al. Features of extramedullary myeloma relapse: high proliferation, minimal marrow involvement, adverse cytogenetics: a retrospective single­center study of 24 cases. Ann Hematol 2012;91(7):1031–7. DOI: 10.1007/s00277­012­1414­5

7. Rosiñol L., Beksac M., Zamagni E. et al. Expert review on soft­ tissue plasmacytomas in multiple myeloma: definition, disease assessment and treatment considerations. Br J Haematol 2021;194(3):496–507. DOI: 10.1111/bjh.17338

8. Dahl I.M.S., Rasmussen T., Kauric G., Husebekk A. Differential expression of CD56 and CD44 in the evolution of extramedullary myeloma. Br J Haematol 2002;116(2):273–7. DOI: 10.1046/j.1365­2141.2002.03258.x

9. Liu Y., Jelloul F., Zhang Y. et al. Genetic basis of extramedullary plasmablastic transformation of multiple myeloma. Am J Surg Pathol 2020;44(6):838–48. DOI: 10.1097/PAS.0000000000001459

10. Mantovani F., Collavin L., Del Sal G. Mutant p53 as a guardian of the cancer cell. Cell Death Differ 2019;26(2):199–212. DOI: 10.1038/s41418­018­0246­9

11. Vande Broek I., Vanderkerken K., van Camp B., van Riet I. Extra­ vasation and homing mechanisms in multiple myeloma. Clin Exp Metastasis 2008;25(4):325–34. DOI: 10.1007/s10585­007­9108­4

12. Yang Y., Macleod V., Bendre M. et al. Heparanase promotes the spontaneous metastasis of myeloma cells to bone. Blood 2004;105(3):1303–9. DOI: 10.1182/blood­2004­06­2141

13. Rasmussen T., Kuehl M., Lodahl M. et al. Possible roles for activating RAS mutations in the MGUS to MM transition and in the intramedullary to extramedullary transition in some plasma cell tumors. Blood 2005;105(1):317–23. DOI: 10.1182/blood­2004­03­0833

14. Jagosky M.H., Usmani S.Z. Extramedullary disease in multiple myeloma. Curr Hematol Malig Rep 2020;15(2):62–71. DOI: 10.1007/s11899­020­00568­3

15. Bhutani M., Foureau D.M., Atrash S. et al. Extramedullary multiple myeloma. Leukemia 2020;34(1):1–20. DOI: 10.1038/s41375­019­ 0660­0

16. Qu X., Chen L., Qiu H. et al. Extramedullary manifestation in multiple myeloma bears high incidence of poor cytogenetic aberration and novel agents resistance. Biomed Res Int 2015;2015:787809. DOI: 10.1155/2015/787809

17. Rasche L., Chavan S.S., Stephens O.W. et al. Spatial genomic heterogeneity in multiple myeloma revealed by multi­region sequencing. Nat Commun 2017;8(1):268. DOI: 10.1038/s41467­017­00296­y

18. Hanamura I. Gain/Amplification of chromosome arm.1q21 in multiple myeloma. Cancers (Basel) 2021;13(2):1–16. DOI: 10.3390/cancers13020256

19. Kim M.K., Suh C., Lee D.H. et al. Immunoglobulin D multiple myeloma: response to therapy, survival, and prognostic factors in 75 patients. Ann Oncol 2011;22(2):411–6. DOI: 10.1093/annonc/mdq393

20. Bladé J., Lust J.A., Kyle R.A. Immunoglobulin D multiple myeloma: presenting features, response to therapy, and survival in a series of 53 cases. J Clin Oncol 1994;12(11):2398–404. DOI: 10.1200/JCO.1994.12.11.2398

21. Ravi P., Kumar S.K., Roeker L. et al. Revised diagnostic criteria for plasma cell leukemia: results of a Mayo Clinic study with comparison of outcomes to multiple myeloma. Blood Cancer J 2018;8(12):116. DOI: 10.1038/s41408­018­0140­1

22. Granell M., Calvo X., Garcia­Guiñón A. et al. Prognostic impact of circulating plasma cells in patients with multiple myeloma: implications for plasma cell leukemia definition. Haematologica 2017;102(6):1099–104. DOI: 10.3324/haematol.2016.158303

23. Rajkumar S.V. Multiple myeloma: 2020 update on diagnosis, risk­ stratification and management. Am J Hematol 2020;95(5):548–67. DOI: 10.1002/ajh.25791

24. Xu J.L., Lai R., Kinoshita T. et al. Proliferation, apoptosis, and intratumoral vascularity in multiple myeloma: correlation with the clinical stage and cytological grade. J Clin Pathol 2002;55(7):530–4. DOI: 10.1136/jcp.55.7.530

25. Shaughnessy J.D., Zhan F., Burington B.E. et al. A validated gene expression model of high­risk multiple myeloma is defined by deregulated expression of genes mapping to chromosome 1. Blood 2007;109(6):2276–84. DOI: 10.1182/blood­2006­07­038430

26. Menges C.W., Altomare D.A., Testa J.R. FAS­associated factor 1 (FAF1): diverse functions and implications for oncogenesis. Cell Cycle 2009;8(16):2528–34. DOI: 10.4161/cc.8.16.9280

27. Leone P.E., Walker B.A., Jenner M.W. et al. Deletions of CDKN2C in multiple myeloma: biological and clinical implications. Clin Cancer Res 2008;14(19):6033–41. DOI: 10.1158/1078­0432. CCR­08­0347

28. Dib A., Peterson T.R., Raducha­Grace L. et al. Paradoxical expression of INK4c in proliferative multiple myeloma tumors: bi­allelic deletion vs increased expression. Cell Div 2006;1:23. DOI: 10.1186/1747­1028­1­23

29. Zhan F., Colla S., Wu X. et al. CKS1B, overexpressed in aggressive disease, regulates multiple myeloma growth and survival through SKP2­ and p27Kip1­dependent and ­independent mechanisms.Blood 2007;109(11):4995–5001. DOI: 10.1182/ blood­2006­07­038703

30. Shaughnessy J. Amplification and overexpression of CKS1B at chro­ mosome band 1q21 is associated with reduced levels of p27Kip1 and an aggressive clinical course in multiple myeloma. Hematology 2005;10 Suppl 1:117–26. DOI: 10.1080/10245330512331390140

31. Misiewicz­Krzeminska I., de Ramón C., Corchete L.A. et al. Quantitative expression of Ikaros, IRF4, and PSMD10 proteins predicts survival in VRD­treated patients with multiple myeloma. Blood Adv 2020;4(23):6023–33. DOI: 10.1182/bloodadvances.2020002711

32. Shaughnessy J.D., Qu P., Usmani S. et al. Pharmacogenomics of bortezomib test­dosing identifies hyperexpression of proteasome genes, especially PSMD4, as novel high­risk feature in myeloma treated with Total Therapy 3. Blood 2011;118(13):3512–24. DOI: 10.1182/blood­2010­12­328252

33. Mulligan G., Lichter D.I., Di Bacco A. et al. Mutation of NRAS but not KRAS significantly reduces myeloma sensitivity to single­agent bortezomib therapy. Blood 2014;123(5):632. DOI: 10.1182/blood­2013­05­504340

34. Chng W.J., Gonzalez­Paz N., Price­Troska T. et al. Clinical and biological significance of RAS mutations in multiple myeloma. Leukemia 2008;22(12):2280–4. DOI: 10.1038/leu.2008.142

35. Staniek J., Lorenzetti R., Heller B. et al. TRAIL­R1 and TRAIL­R2 mediate TRAIL­dependent apoptosis in activated primary human B lymphocytes. Front Immunol 2019;10:951. DOI: 10.3389/fimmu.2019.00951

36. Mlynarcikova M., Balcarkova J., Mickova P. et al. Molecular cytogenetic analysis of chromosome 8 aberrations in patients with multiple myeloma examined in 2 different stages, at diagnosis and at progression/relapse. Clin Lymphoma Myeloma Leuk 2016;16(6):358–65. DOI: 10.1016/j.clml.2016.02.038

37. Wang S.Y., Hao H.L., Deng K. et al. Expression levels of phosphatase and tensin homolog deleted on chromosome 10 (PTEN) and focal adhesion kinase in patients with multiple myeloma and their relationship to clinical stage and extramedullary infiltration. Leuk Lymphoma 2012;53(6):1162–8. DOI: 10.3109/10 428194.2011.647311

38. Fonseca R., Blood E., Rue M. et al. Clinical and biologic implications of recurrent genomic aberrations in myeloma. Blood 2003;101(11):4569–75. DOI: 10.1182/blood­2002­10­3017

39. Abdallah N., Rajkumar S.V., Greipp P. et al. Cytogenetic abnormalities in multiple myeloma: association with disease characteristics and treatment response. Blood Cancer J 2020;10(8):82. DOI: 10.1038/s41408­020­00348­5

40. Kienast J., Berdel W.E. C­maf in multiple myeloma: an oncogene enhancing tumor­stroma interactions. Cancer Cell 2004;5(2):109– 10. DOI: 10.1016/s1535­6108(04)00030­3

41. Chang H., Qi Q., Xu W., Patterson B. c­Maf nuclear oncoprotein is frequently expressed in multiple myeloma. Leukemia 2007;21(7):1572–4. DOI: 10.1038/sj.leu.2404669

42. Wei G.Q., Wang L.J., Yang H.J. et al. Clinical implications of c­maf expression in plasma cells from patients with multiple myeloma. Exp Hematol Oncol 2017;6:16. DOI: 10.1186/s40164­017­0076­3

43. Sawyer J.R. The prognostic significance of cytogenetics and molecular profiling in multiple myeloma. Cancer Genet 2011;204(1):3–12. DOI: 10.1016/j.cancergencyto.2010.11.002

44. Rana S., Sreedharanunni S., Panakkal V. et al. 16q23/MAF gene deletion is a frequent cytogenetic abnormality in multiple myeloma associated with IgH deletion but significantly lower incidence of high­risk translocations. Clin Lymphoma Myeloma Leuk 2021;21(4):e398–401. DOI: 10.1016/j.clml.2020.11.012

45. Xu Y., Zou R., Wang J. et al. The role of the cancer testis antigen PRAME in tumorigenesis and immunotherapy in human cancer. Cell Prolif 2020;53(3):e12770. DOI: 10.1111/cpr.12770

46. De Carvalho F., Vettore A.L., Colleoni G.W.B. Cancer/testis antigen MAGE­C1/CT7: new target for multiple myeloma therapy. Clin Dev Immunol 2012;2012:257695. DOI: 10.1155/2012/257695

47. Sticca T., Caberg J.H., Wenric S. et al. Genomic studies of multiple myeloma reveal an association between X chromosome alterations and genomic profile complexity. Genes Chromosomes Cancer 2017;56(1):18–27. DOI: 10.1002/gcc.22397

48. Palumbo A., Avet­Loiseau H., Oliva S. et al. Revised International Staging System for Multiple Myeloma: a report from International Myeloma Working Group. J Clin Oncol 2015;33(26):2863–9. DOI: 10.1200/JCO.2015.61.2267

49. Thakurta A., Ortiz M., Blecua P. et al. High subclonal fraction of 17p deletion is associated with poor prognosis in multiple myeloma. Blood 2019;133(11):1217–21. DOI: 10.1182/blood­2018­10­880831

50. Flynt E., Bisht K., Sridharan V. et al. Prognosis, biology, and targeting of TP53 dysregulation in multiple myeloma. Cells 2020;9(2):287. DOI: 10.3390/cells9020287

51. Walker B.A., Mavrommatis K., Wardell C.P. et al. A high­risk, Double­ Hit, group of newly diagnosed myeloma identified by genomic analysis. Leukemia 2019;33(1):159–70. DOI: 10.1038/s41375­018­0196­8

52. Corre J., Perrot A., Caillot D. et al. del(17p) without TP53 mutation confers a poor prognosis in intensively treated newly diagnosed patients with multiple myeloma. Blood 2021;137(9):1192. DOI: 10.1182/blood.2020008346